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染色体结构显示与检测技术规程

分类:新闻中心 发布时间:2025-05-09 847次浏览

一、染色体显带技术(一)Q 显带法(荧光显带)标本预处理取干热预处理或自然老化的...

一、染色体显带技术
(一)Q 显带法(荧光显带)
  1. 标本预处理取干热预处理或自然老化的染色体标本,浸入 pH6.0 缓冲液中漂洗 5~10 分钟

  1. 荧光染色转移至 pH6.0 的 GM 或 QD 荧光染液中,染色 5~10 分钟

  1. 漂洗去浮色用新鲜 pH6.0 缓冲液漂洗 2 次,每次 5 分钟

  1. 镜检观察标本面滴加 1~2 滴缓冲液,加盖玻片(避免气泡),荧光显微镜下观察

(二)G 显带法
1. 胰酶 - Giemsa 混合显带法
  • 预处理中期染色体标本 60℃温箱处理 20~30 分钟(或 37℃过夜),浸入 56℃、0.025M pH6.8 磷酸缓冲液温浴 10 分钟

  • 消化染色液配制(现用现配)

  • 0.025M pH6.8磷酸缓冲液  73.0ml  
  • 甲醇                    27.0ml  
  • Giemsa干粉              50.0mg  
  • 0.25%胰酶溶液           0.3~0.4ml  
  • 消化染色标本浸入混合液中反应 10~30 分钟

  • 封片自来水冲洗→蒸馏水漂洗→晾干→二甲苯透明 2~3 分钟→中性树脂封固

2. 常规 Giemsa 显带法
  • 预处理标本 60~80℃温箱处理 20~30 分钟(或 37℃过夜)

  • 胰酶消化0.85% NaCl 配制的 0.25% 胰蛋白酶溶液消化 3~5 分钟

  • 染色吸水纸吸去多余胰酶液,立即浸入 Giemsa 染液染色 10 分钟

  • 封片自来水洗→蒸馏水漂洗→晾干→二甲苯透明 2~3 分钟→中性树胶封固

二、姐妹染色单体分化染色技术
(一)BUdR 掺入预处理
  1. 培养液制备含 3~10μg/ml BUdR 的完全培养液(避光保存)

  1. 细胞培养

  • 传代细胞:末次传代后换用 BUdR 培养液

  • 人末梢血:直接使用 BUdR 培养液,培养瓶用黑布包裹,37℃培养

  1. 周期控制培养至细胞经历 2 个细胞周期(人外周血 48~72 小时),加秋水仙素后制片

(二)分化染色方法
1. 热磷酸处理法(方法一)
  • 标本老化 1~2 天

  • 85~89℃预热的 1M NaH2PO4 溶液处理 15 分钟

  • 温蒸馏水漂洗→蒸馏水冲洗→晾干→Giemsa 染色 10 分钟→封固

2. FPG 法(荧光 - 光解 - Giemsa)
  • 标本准备:含 BUdR 的中期染色体玻片

  • 荧光染色:0.5μg/ml Hoechst 33258(pH7.0 缓冲液配制)染色 12~15 分钟

  • 光解处理:20W 黑光灯(距离 5cm)照射 30 分钟

  • 热修复:50~60℃ 2×SSC 液温育 2 小时,蒸馏水冲洗晾干

  • 复染封固:pH6.8 的 2% Giemsa 染色 15 分钟,透明封固

3. 日光照射法(方法三)
  • 标本处理:30W 日光灯下(灯距 3cm)照射 6 小时

  • 热缓冲处理:60℃ 2×SSC 液处理 15 分钟

  • Giemsa 染色 10 分钟,常规封固

三、染色体脆性位点检测优化方案
提高检出率关键措施:
  1. 培养液血清浓度降至 5%

  1. 使用无叶酸 MEM-Fra 培养基

  1. 调节 pH 至 7.5

四、微核检测技术
(一)细胞培养法(方法一)
  1. 样本处理静脉血 0.5ml 肝素抗凝,加入 5ml 含 20% 小牛血清的 Eagle 培养液(含 40μg/ml PHA)

  1. 培养固定37℃培养 48~72 小时→1000rpm 离心 8 分钟→3:1 甲醇 / 冰醋酸固定 3 次(每次 15 分钟)

  1. 制片染色冷冻载片滴片法→自然干燥→10% Giemsa(pH6.8)染色 15 分钟

(二)甲基纤维素富集法(方法二)
  1. 样本处理肝素抗凝血 0.5~0.6ml,加入等体积 0.5% 甲基纤维素,37℃静置 30 分钟

  1. 离心制片2000rpm 离心 10 分钟→弃上清→沉淀物涂片→Wright 法染色

(三)明胶沉降法(方法三)
  1. 血液处理无名指血 0.6ml,去除纤维蛋白,加入 3% 明胶混匀,37℃自然沉降 50 分钟

  1. 染色观察吸上清→离心沉淀→涂片干燥→Wright 染色 30 分钟 + Giemsa 复染 2 分钟

五、非程序 DNA 合成检测(UDS)
(一)放射自显影法
  1. 细胞培养WI-38 成纤维细胞培养至汇合,换用无精氨酸 EMEM 培养液培养 20~24 小时

  1. 处理标记加入 10mM 羟基脲(阳性对照加 MNNG)培养 2 小时→3H-TdR 处理 20~24 小时

  1. 标本制备BSS 漂洗→固定→涂放射自显影胶→曝光显影→Giemsa 染色

  1. 结果分析油镜下计数核银粒数,排除 S 期细胞,计算银粒数 / 核均值或 10 银粒细胞百分率

(二)液闪计数法
  1. 前处理同放射法(至 BSS 漂洗步骤)

  1. 细胞消化0.25% 胰蛋白酶制成单细胞悬液

  1. 计数制备10% 三氯醋酸处理→玻璃纤维滤膜收集细胞→无水乙醇脱水→闪烁液计数

  1. 结果表示dpm/10⁶细胞或 cpm / 每皿细胞

技术规范说明:
  1. 所有染色步骤需控制温度、时间参数,避免交叉污染

  1. 荧光染料需避光操作,显带标本建议当天观察

  1. 微核检测标本应新鲜制备,染色 pH 值严格校准

  1. UDS 实验需设置阳性 / 阴性对照,确保放射性操作安全

本规程适用于染色体核型分析、突变检测及 DNA 损伤研究,可根据实验目的选择具体方法组合使用,相关产品的购买可以咨询艾美捷科技。


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